|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||||||||||
|
|
![]() |
![]() |
|||||||||||
|
|
|||||||||||||
![]() |
|
![]() |
|
![]() |
|
![]() |
|
![]() |
|
![]() |
![]() |
||
![]() |
![]() |
![]() |
![]() |
![]() |
![]() |
||||||||
| AG Technau | |||||||||||||
| AG Pflugfelder | |||||||||||||
| Arbeitsgruppe Technau
Die Arbeitsgruppe befaßt sich mit der Entwicklung des Nervensystems. Seit über 100 Jahren ist die Fruchtfliege Drosophila Objekt genetischer Analyse. Entsprechend groß ist die Palette verfügbarer Daten, Materialien und Serviceeinrichtungen (Mutanten, molekulare Proben, transformante Stämme, Stock Centers, Datenbanken, etc.). Das Genom von Drosophila ist vollständig sequenziert. In den letzten Jahren sind für einige "Modellorganismen" wie Drosophila viele der an Entwicklungs- und Differenzierungsprozessen beteiligten Gene identifiziert und in ihrer Funktion analysiert worden. Aufgrund eines erstaunlich hohen Maßes an Konservierung konnte eine Vielzahl entsprechender Faktoren auch in anderen Organismen, einschließlich der Vertebraten isoliert sowie in ihrer Funktion untersucht und verglichen werden. Die aus diesem Forschungsobjekt gewonnenen Kenntnisse sind somit nicht nur relevant für ein generelles Verständnis entwicklungsbiologischer Prozesse und ihrer Evolution sondern auch von praktischer Bedeutung für die biomedizinische Grundlagenforschung. Mehr als die Hälfte der bekannten menschlichen Gene, die in mutierter Form Krankheiten verursachen, sind im Drosophila-Genom konserviert. Das ZNS von Drosophila umfaßt das Gehirn sowie im Rumpfbereich das aus 3 thorakalen und 8 abdominalen Neuromeren (segmentalen Einheiten) fusionierte ventrale Nevensystem (Bauchmark). Das Gehirn geht aus der neurogenen Region des Kopfektoderms (procephale neurogene Region) hervor, das Bauchmark aus der neurogenen Region des Rumpfektoderms (ventrale neurogene Region). Aus jeder dieser neurogenen Regionen delaminiert nach der Gastrulation eine Population neuraler Stammzellen (Neuroblasten) in einem definierten räumlichen und zeitlichen Muster. Jeder Neuroblast produziert eine bestimmte Zahl an Tochterzellen, die sich zu definierten Zelltypen differenzieren (Zellstammbaum). Ein tiefgreifendes Verständnis von Entwicklungsprozessen erfordert gleichermaßen die Erfassung der sich verändernden Strukturen (Zellen, Gewebe), die Identifizierung der beteiligten genetischen und molekularen Faktoren und die Klärung des funktionellen Zusammenhanges zwischen diesen Faktoren und den strukturellen Veränderungen. Die Fruchtfliege Drosophila bietet für eine solche kombinierte Analyse auf der zellulären, genetischen und molekularen Untersuchungsebene ideale Voraussetzungen. Um diese nutzen zu können, kommt in unseren Projekten eine große Vielfalt methodischer Ansätze zum Einsatz. Hierzu gehören Mikromanipulationstechniken (Zelltransplantationen, Einzelzellmarkierungen), molekulargenetische Techniken (Klonierungstechniken, Keimbahntransformation, PCR, Microarrays, Enhancer-trap, in situ Hybridisierung, ektopische Genexpression), Kreuzungsgenetik, Mutagenesen, Mosaikanalysen, Primärkultur, Patch-clamp Technik, Immunhistochemie, sowie verschiedene Verfahren der Bildanalyse und Dokumentation (Licht- und Elektronenmikroskopie, Laser Scanning Mikroskopie, 3D Rekonstruktion, 4D-Mikroskopie). Publikationen 1995 ff Halter D, Urban J, Rickert C, Ner S, Ito K, Travers A and Technau GM (1995). The homeobox gene repo is required for the differentiation and maintenance of glia function in the embryonic nervous system of Drosophila melanogaster. Ito K, Urban J and Technau GM (1995). Distribution, classification and development of Drosophila glial cells in the late embryonic and early larval ventral nerve cord. Schmidt-Ott U, Gonzáles-Gaitán M and Technau GM (1995). Analysis of neural elements in head-mutant Drosophila embryos suggest segmental origin of the optic lobes. Udolph G, Lüer K, Bossing T and Technau GM (1995). Commitment of CNS progenitors along the dorsoventral axis of the Drosophila neuroectoderm. Broadus J, Skeath JB, Spana EP, Bossing T, Technau GM and Doe CQ (1995). New neuroblast markers and the origin of the aCC/pCC neurons in the Drosophila central nervous system. Urban J. and Technau GM (1995). Enstehung von Zelldiversität im ZNS von Drosophila. Bossing T, Technau GM and Doe CQ (1996). huckebein is required for glial development and axon pathfinding in the NB 1-1 and NB 2-2 lineages in the Drosophila CNS. Bossing T, Udolph G, Doe CQ and Technau GM (1996). The embryonic CNS lineages of Drosophila melanogaster. I. Neuroblast lineages derived from the ventral half of the neuroectoderm. Cantera R and Technau GM (1996). Glial cells phagocytose neuronal debris during the metamorphosis of the central nervous system in Drosophila melanogaster. Dittrich R, Bossing T, Gould AP, Technau GM and Urban J (1997). The differentiation of the serotonin neurons in the Drosophila ventral nerve cord depends on the combined function of the zink finger proteins Eagle and Huckebein. Lüer K, Urban J., Klämbt C and Technau GM (1997). Induction of identified mesodermal cells by CNS midline progenitors in Drosophila. Schmidt H, Rickert C, Bossing T, Vef O, Urban J and Technau GM (1997). The embryonic central nervous system lineages of Drosophila melanogaster. Landgraf M, Bossing T, Technau GM and Bate M (1997). The origin, location and projections of the embryonic abdominal motoneurons of Drosophila. Menne T, Lüer K, Technau GM and Klämbt C (1997). CNS midline cells in Drosophila induce the differentiation of lateral neural cells. Urban J and Technau GM (1997). Cell lineage and cell fate specification in the embryonic CNS of Drosophila. Udolph G, Urban J, Rüsing G, Lüer K and Technau GM (1998). Differential effects of EGF receptor signalling on neuroblast lineages along the dorsoventral axis of the Drosophila CNS. Prokop A, Bray S, Harrison E and Technau GM (1998). Homeotic regulation of segment-specific differences in neuroblast numbers and proliferation in the Drosophila central nervous system. Schmidt H, Lüer K., Hevers W. and Technau GM (2000). Ionic currents of Drosophila embryonic neurons derived from selectively cultured CNS midline precursors. Rusten TE, Cantera R, Urban J, Technau GM, Kafatos FC and Barrio R (2001). Spalt modifies EGFR-mediated induction of chordotonal precursors in the embryonic PNS of Drosophila promoting the development of oenocytes. Deshpande N, Dittrich R, Technau GM and Urban J (2001). Successive specification of Drosophila neuroblasts NB6-4 and NB7-3 depends on interaction of the segment polarity genes wingless, gooseberry and naked cuticle. Berger C, Urban J and Technau GM (2001). Stage-specific inductive signals in the Drosophila neuroectoderm control the temporal sequence of neuroblast specification. Keleman K, Rajagopalan S, Cleppien D, Teis D, Paiha K, Huber LA, Technau GM and Dickson BJ (2002). Comm sorts Robo to control axon guidance at the Drosophila midline. Cantera R, Lüer K, Rusten TE, Barrio R, Kafatos FC and Technau GM (2002). Mutations in spalt cause a severe but reversible neurodegenerative phenotype in the embryonic central nervous system of Drosophila melanogaster. Küppers B, Sánchez-Soriano N, Letzkus J, Technau GM and Prokop A (2003). In developing Drosophila neurons the production of [[gamma]]-amino butyric acid is tightly regulated downstream of glutamate decarboxylase translation and can be influencd by calcium. Weigmann K, Klapper R, Strasser T, Rickert C, Technau GM, Jäckle H, Janning W and Klämbt, C (2003). FlyMove a new way to look at development of Drosophila. Landgraf M, Sánchez-Soriano N, Technau GM, Urban J, and Prokop A (2003). Charting the Drosophila neuropile: a strategy for the standardised characterisation of genetically amenable neurites. Urbach R, Schnabel R and Technau GM (2003). The pattern of neuroblast formation, mitotic domains, and proneural gene expression during early brain development in Drosophila. Urbach R and Technau GM (2003). Segment polarity and DV patterning gene expression reveals segmental organization of the Drosophila brain. Urbach R and Technau GM (2003). Molecular markers for identified neuroblasts in the developing brain of Drosophila. Urbach R and Technau GM (2003). Early steps in building the insect brain: Neuroblast formation and segmental patterning in the developing brain of different insect species. Urbach F, Technau GM, and Breidbach O (2003). Spatial and temporal pattern of neuroblasts, proliferation, and Engrailed expression during early brain development in Tenebrio molitor L. (Coleoptera). Gendre N, Lüer K, Friche S, Grillenzoni N, Ramaekers A, Technau GM and Stocker R (2004). Integration of complex larval chemosensory organs into the adult nervous system of Drosophila. Küppers-Munther B, Letzkus J, Lüer K, Technau GM, Schmidt H and Prokop A (2004). A new culturing strategy optimises Drosophila primary cell cultures for structural and functional analyses. Urbach R and Technau GM (2004). Neuroblast formation and patterning during early brain development in Drosophila. Soustelle L, Jacques C, Altenhein B, Technau GM, Volk T and Giangrande A (2004). Terminal tendon cell differentiation requires the glide/gcm complex. Berger C, Pallavi SK, Prasad M, Shashidhara LS and Technau GM (2005). A critical role for Cyclin E in cell fate determination in the central nervous system of Drosophila. Berger C, Pallavi SK, Prasad M, Shashidhara LS and Technau GM (2005). CyclinE acts under the control of Hox-genes as a cell-fate determinant in the developing central nervous system. Technau GM and Urban J (2005). Einblicke in die frühe Entwicklung des Zentralen Nervensystems am Drosophila-Modell. Sprecher SG, Urbach R, Technau GM, Rijli FM, Reichert H and Hirth F (2006). The columnar gene vnd is required for tritocerebral neuromere formation during embryonic brain development of Drosophila. Urbach R, Volland D, Seibert J and Technau GM (2006). Segment-specific requirements for dorsoventral patterning genes during early brain development in Drosophila. Altenhein B*, Becker A*, Busold C, Beckmann B, Hoheisel JD and Technau GM (2006). Expression profiling of glial genes during Drosophila embryogenesis. Vef O, Cleppien D, Löffler T, Altenehin B and Technau GM (2006). A new strategy for efficient in vivo screening of mutagenized Drosophila embryos. Technau GM, Berger C and Urbach R (2006). Generation of cell diversity and segmental pattern in the embryonic central nervous system of Drosophila. Edenfeld G*, Altenhein B*, Zierau A, Cleppien D, Krukkert K, Technau GM and Klämbt C (2007). Notch and Numb are required for normal migration of peripheral glia in Drosophila. Rogulja-Ortmann A, Lüer K, Seibert J, Rickert C and Technau GM (2007). Programmed cell death in the embryonic central nervous system of Drosophila melanogaster.
|
|||||||||||||
| Informationen über die Arbeitsgruppe Pflugfelder finden Sie vorläufig hier. | |||||||||||||
![]() |
|||||||||||||